2022年第一期

铅对革兰氏阴性菌内毒素脂多糖介导原代小胶质细胞氧化应激反应的影响

日期:2023-11-22

摘要

目的: 通过观察乙酸铅[lead acetate, Pb(Ac)2]对革兰氏阴性菌内毒素脂多糖(lipopolysaccharide, LPS)介导大鼠原代小胶质细胞氧化应激反应的影响,探索中枢神经系统小胶质细胞对铅与内毒素产生的反应或后果。 方法: 随机将培养后的小胶质细胞分为阴性对照组(Control组)、 LPS组(100 ng/ml LPS)、不同浓度Pb (Ac)2组1(20、50、100 μM)、 LPS + Pb(Ac)2组[ 20、50、100 μM Pb(Ac)2 + 100 ng/ml LPS] 及不同浓度Pb(Ac)2组2(10、20 、50、100、200、500、1 000、2 000 μM),置37℃、5 % CO2培养箱中孵育24 h或36 h,采用光学或免疫荧光显微镜观察或鉴定细胞,用MTT法检测铅作用后细胞存活率,用Griess Assay检测细胞分泌一氧化氮(nitric oxide, NO)情况、Western blot 检测诱导型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase, iNOS)的表达水平。结果: LPS单用介导小胶质细胞24 h后,可使NO、iNOS水平上调(P < 0.05);LPS与Pb(Ac)2共孵育后,NO水平下调(P < 0.05),且iNOS与NO有一致性下调趋势;细胞生长状况随着铅浓度增加而出现损害现象,如细胞聚集、胞膜不完整、轮廓不清、粘合成团,核仁模糊不清;小胶质细胞存活率随Pb (Ac)2浓度的增加而下降。结论: LPS可导致原代小胶质细胞发生氧化应激反应,与Pb(Ac)2合用见氧化应激产物下调,似乎呈“保护”作用,但细胞形态学及细胞存活率呈现不良变化,与NO或iNOS的减少有“分离现象”。

Abstract

Objective: To investigate the effect of lead acetate [Pb(Ac)2] on oxidative stress response mediated by lipopolysaccharide (LPS), bacterial endotoxin, in primary microglia derived from Sprague Dawley (SD) rats. To explore the reaction and consequence of microglia in central nervous system to lead and endotoxin. Methods: Microglia were randomly divided into negative group (Control group), LPS group (100 ng/mL LPS), Pb(Ac)2 groups 1 (20, 50, 100 μM), LPS + Pb(Ac)2 group [(20, 50, 100 μM Pb(Ac)2 + 100 ng/mL LPS] and Pb(Ac)2 group 2 (10, 20, 50, 100, 200, 500, 1 000, 2 000 μM) were incubated at 37℃ in 5% CO2 for 24 h or 36 h. The microglial cells were purified by shake-off in a orbit shaker, and identified by immunofluorescence staining microscopy. The cell survival rate was detected by MTT after Pb(Ac)2 was applied alone. The morphological changes of the cells were observed by microscopy. The nitric oxide (NO) or inducible nitric oxide synthase (iNOS) were respectively measured by Griess Assay or Western Blot. Results: NO or iNOS in LPS group were significantly up-regulated when compared to those in Control group (P < 0.05). Right after LPS was added to the microglia, 20, 50 or 100 µM of Pb(Ac)2 were added and then co-incubated with the cells for 24 h. NO level was significantly down-regulated (P < 0.05) in the supernatant. The expression of iNOS protein showed a consistently down-regulated trend with NO. To emphasize, the cells were found to be impaired with an increasing concentrations of Pb(Ac)2 at 20, 50 or 100 µM under the microscopy, which the celularl aggregation like adhesion clumps, broken cell membrane, and unclear nuclei were seen. Also, the survival rate of microglia was down-regulated while using increasing concentration of Pb(Ac)2 above. Conclusion: The primary microglia were activated such as the up-regulation of NO and iNOS by LPS alone. The oxidative-stress response were down-regulated after the microglia were exposed to Pb(Ac)2 with LPS in co-incubation. It showed the action as if “protectiove effect” from Pb(Ac)in the latter. Nevertheless, the morphological changes and the survival rate of the microglia were showed not in good condition. There was “segregation phenomenon” between the morphological changes and biochemical measure. However, the morphology of the microglia did not recover a normal feature when using Pb(Ac)2 alone. In a word, the reasons and mechanisms of “segregation phenomenon” still kept unclear. It suggested that the further studies be needed.

关键词

乙酸铅 / 原代小胶质细胞 / 革兰氏阴性菌内毒素脂多糖 / 一氧化氮 / 诱导型一氧化氮合酶

Key words

Lead acetate / Primary microglia / Gram-negative bacteria endotoxin lipopolysaccharide / Nitric oxide / Inducible nitric oxide synthase

引用本文

胡建英 董宝莲 李青宴 郭玲 宋超铅对革兰氏阴性菌内毒素脂多糖介导原代小胶质细胞氧化应激反应的影响. 阿尔茨海默病及相关病杂志. 2022, 5(1): 32-37 https://doi.org/10.3969/j.issn.2096-5516.2022.01.006
HU Jian-ying DONG Bao-lian LI Qing-yan GUO Ling SONG ChaoEffect of lead on oxidative stress response of primary microglia mediated by lipopolysaccharide from gram-negative bacteria. Chinese Journal of Alzheimer's Disease and Related Disorders. 2022, 5(1): 32-37 https://doi.org/10.3969/j.issn.2096-5516.2022.01.006
 
小胶质细胞是中枢神经系统的固有免疫细胞,是一类反应性细胞,约占大脑皮质神经胶质总数的5 %,在维持脑内稳态中发挥重要作用[1-3],在被LPS等病原微生物激活后,一方面可分泌IL-4、IL-10等具有保护作用的细胞因子,进行自我修复应对伤害[3];另一方面可产生吞噬、清除异物或“垃圾”等不洁物,助力氧化应激等反应[4],进而会引起阿尔茨海默病(Alzheimer disease, AD)等神经退行性疾病的发生发展。铅作为一种难自然降解的重金属毒物,是环境污染物之一。随着社会经济的发展,铅在冶金、钢铁和电子等领域应用广泛,使得人群对铅的接触增加[5]。有研究发现,铅可影响小胶质细胞功能,进而损伤神经细胞,但对小胶质细胞对神经系统的损伤抑制尚存在争议[6]。本研究旨通过乙酸铅对LPS介导的SD大鼠大脑皮层原代小胶质细胞氧化应激反应的影响,探讨小胶质细胞对神经系统的损伤抑制。

1 材料与方法

1.1 实验动物

SPF级2~3 d龄SD新生大鼠,雌雄不限,购自昆明医科大学实验动物中心,生产许可证:SYXK(滇)2015-0002。

1.2 主要试剂

乙酸铅(25 g/瓶)、多聚-D-赖氨酸氢溴酸盐(5 mg/支)、抗β-Actin抗体(200 μl/支)均购自美国Sigma-Aldrich公司;青链霉素(100 ml/瓶)、0.25% Trypsin-EDTA胰酶(100 ml/瓶)均购自美国Millipore公司;α-MEM培养基(500 ml/瓶)购自以色列BI公司;胎牛血清(500 ml/瓶)购自美国Gemini公司;PBS(500 ml/瓶)购自美国Gibco公司;抗CD11b抗体(100 μl/支)购自英国Abcam公司、抗iNOS抗体(150 μl/支)购自美国BD公司;山羊抗兔IgG抗体(1 ml/支)购自美国Gene Tex公司;BCA试剂盒(500次/盒)、MTT细胞增殖及细胞毒性检测试剂盒(500次/盒)及山羊抗小鼠(1 ml/支)均购自中国碧云天;快速免染丙烯酰胺制胶试剂盒, 10%(400 ml/套)购自美国Bio-Rad公司;光学显微镜及成像系统购自德国徕卡公司等。

1.3 方法

1.3.1 原代小胶质细胞分离

将融合的混合胶质细胞置生物摇床37℃、250 rpm、1.5 h,分离并收集小胶质细胞,以2.5 × 105 cells/ml细胞密度按0.5 ml/well接种至24孔板或按100 μl/well接种至96孔板,30 min后,更换为含5 ng/ml M-CSF的α-MEM培养基,于37℃、5 % CO2培养箱中孵育约24 h即可进行实验。

1.3.2 细胞形态学观察

原代小胶质细胞接种至24孔板,于37℃、5 % CO2培养箱中孵育24 h,分别在既定的孔内加入不同浓度的Pb(Ac)2和/或与LPS共孵育24 h后,在光学显微镜下观察其生长状况及形态。

1.3.3 小胶质细胞鉴定

采用乔廷廷等[4]方法。将原代小胶质细胞按100 μl接种至事前经0.01 mg/ml多聚赖氨酸包被的爬片上,待细胞贴壁后,更换为含5 ng/ml M-CSF的α-MEM培养基培养3 d后,鉴定细胞:用PBS洗3次;4 %多聚甲醛固定20 min;PBS洗3次;1 % Triton-100透膜30 min;PBS洗3次;1 % BSA室温封闭1 h;加入红色荧光标记的CD11b抗体(1:1 000),室温孵育2 h,PBS洗3次;加入山羊抗兔IgG抗体(1:1 000),避光孵育1 h;DAPI染细胞核,孵育20 min;封片,晾干,在荧光显微镜下观察。

1.3.4 细胞存活率的检测

采用MTT法。将接种至96孔板的原代小胶质细胞经不同浓度的Pb(Ac)2作用24 h后,按照MTT试剂盒说明书,每孔加入5 mg/ml的MTT溶液10 μl,继续培养4 h,每孔加入100 μl甲瓒溶解液,37℃孵育约4 h,用酶标仪在560 nm波长处检测其吸光度。细胞存活率(%)=(处理组吸光度值/Control组吸光度值)× 100%。

1.3.5 实验分组

将培养后的小胶质细胞随机分为:①阴性对照组(Control组):无药物处理,其余平行操作;②LPS组:100 ng/ml LPS;③不同浓度Pb(Ac)2组1(20、50、100 μM);④LPS + Pb(Ac)2组[ 20、50、100 μM Pb(Ac)2 + 100 ng/ml LPS];均于37℃、5 % CO2培养箱中孵育24或36 h。⑤不同浓度Pb(Ac)2组2(10、20 、50、100、200、500、1 000、2 000 μM),于37℃、5 % CO2培养箱孵育24 h。

1.3.6 Griess Assay检测NO

取与LPS、Pb(Ac)2单独或复合作用并孵育24或36 h的原代小胶质细胞,离心,取细胞上清液,按照Griess Assay说明书检测NO,用酶标仪在560 nm波长下测定吸光度,用NaNO2标准曲线计算NO浓度值。

1.3.7 Western blot

取与LPS、Pb(Ac)2单独或复合作用并孵育24 h的原代小胶质细胞,加入蛋白酶抑制剂和PMSF的RIPA裂解液后提取细胞总蛋白,按照BCA试剂盒说明书检测蛋白浓度,以确定上样量(20 μg/lane)。制备免染胶、电泳,蛋白转印至PVDF膜、封闭,加入抗iNOS抗体(1:2 000)或抗β-actin抗体(1:2 500),置4℃下孵育过夜;TBST洗膜3次,每次15 min;加入山羊抗小鼠(1:5 000),室温孵育2 h;TBST洗膜3次,每次15 min;最后,按照说明书用ECL显影液曝光,Bio-Rad ChemiDoc MP成像系统获得结果。

1.4 统计学分析

用GraphPad Prism 8软件进行统计学分析,Image J软件进行图像处理。所有数据采用(均数±标准误)表示。组间比较使用单因素方差分析(one-way ANOVA );P < 0.05表示差异有统计学意义。

2 结果

2.1 小胶质细胞的鉴定结果

结果显示,经免疫荧光染色后,小胶质细胞呈圆形、卵形;细胞核与DAPI抗体结合后呈蓝色,为细胞总数(图1A);红色荧光标记的CD11b抗体与小胶质细胞抗原结合后呈红色,为小胶质细胞总数(图1B); 二者融合后呈1个完整的细胞单位(图1C)。按(Merge/DAPI) × 100 %,计算出小胶质细胞阳性率为98.4 %。
图1 原代小胶质细胞的鉴定

Fig.1 Identification of primary microglia

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2.2 LPS及不同浓度Pb(Ac)2对原代小胶质细胞生长状态的影响

结果显示,Control组小胶质细胞形态正常,呈卵圆形、梭形、三角形或分枝状等不同形态(图2a);LPS组与Control组比较,较多小胶质细胞胞体变小,突起或分枝减少,但可见细胞清晰边界(图2b);Pb(Ac)20、50、100 μM单用各组与Control组比较,细胞变小变圆,突起细小,细胞密度降低,并随Pb(Ac)2浓度的增加,细胞碎片增加(图2c、e、g);LPS + Pb(Ac)20、50、100 μM联合应用各组分别与LPS组或Pb(Ac)2单用组比较,均见小胶质细胞突起及分枝有所改善,突起数量逐步增多接近control组状况(图2 h);但随着Pb(Ac)2浓度的增加,细胞相互粘合成团、细胞边界不清加重,胞膜不完整、轮廓不清、核仁模糊不清;漂浮细胞增加(图2d、f、h)。
图2 原代小胶质细胞不同处理后的生长状态

Fig.2 Growth status of primary microglia after different treatments

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2.3 不同浓度Pb(Ac)2对原代小胶质细胞存活率的影响

MTT检测结果显示,Pb(Ac)2浓度为10~100 μM时,细胞存活率未受影响;为200~2 000 μM时,细胞存活率随Pb(Ac)2浓度的增加而降低,见表1。
表1 Pb(Ac)2与原代小胶质细胞孵育24 h的细胞存活率

Tab.1 Cell viability of Pb(Ac)2 incubated with primary microglia for 24 h

乙酸铅浓度 (μM)n细胞存活率(%)
-3100.0
103105.6
203113.3
503116.0
1003108.8
200378.5
500375.7
1 000366.0
2 000367.1

2.4 不同浓度Pb(Ac)2和/或LPS对原代小胶质细胞分泌NO的影响

结果显示,LPS和/或不同浓度的Pb(Ac)2与原代小胶质细胞共孵育24 h或36 h后,LPS组细胞上清液中的NO浓度显著上调,与Control组比较,差异有统计学意义(P < 0.01, n=3)、(P < 0.05, n=3);LPS + Pb (Ac)2 20、50、100 μM各组细胞上清液中的NO浓度下调,且与Pb(Ac)2浓度似乎形成依赖关系;与LPS组比较,差异有统计学意义(P < 0.05, P< 0.01, n=3)、(P均 < 0.05, n =3),见图3、图4。
图3 Pb(Ac)2和/或LPS与原代小胶质细胞共孵育24 h后NO变化

Fig.3 Variation of NO after Pb(Ac)2 and/or LPS were co-incubated with primary microglia for 24 h

Note: *P < 0.05; **P < 0.01

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图4 Pb(Ac)2和/或LPS与原代小胶质细胞共孵育36 h后NO变化

Fig.4 Variation of NO after Pb(Ac)2 and/or LPS were co-incubated with primary microglia for 36 h

Note: *P<0.05

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2.5 不同浓度Pb (Ac)2和/或LPS对原代小胶质细胞iNOS表达的影响

Western blot结果显示,LPS组iNOS蛋白表达水平显著上调,与Control组比较,差异有统计学意义(P < 0.01, n=3);LPS + Pb (Ac)20、100 μM各组iNOS蛋白表达水平下调,与LPS组比较,差异无统计学意义(P > 0.05, n=3),见图5。
图5 Pb(Ac)2和/或LPS与原代小胶质细胞共孵育24 h后的iNOS蛋白表达变化

Fig. 5 Variation of iNOS after Pb(Ac)2 and/or LPS were co-incubated with primary microglia for 24 h

Note: **P<0.01

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3 讨论

在自然界中铅主要以离子状态存在,易被人体吸收[7]。有研究发现,环境因素可能是诱发AD的重要因素之一[8],铅可能导致人的认知能力下降[8,9]。本研究以原代小胶质细胞作为研究对象,在LPS介导的氧化应激反应成功的细胞模型上,采用不同浓度 Pb (Ac)2和LPS同时与原代小胶质细胞共孵育24 h或36 h,观察对细胞形态、细胞存活率及生化指标的影响。
梅莉等[10]研究结果显示,50、100、200、400 μM的Pb (Ac)2与大脑皮质神经细胞共孵育24 h后,出现细胞胞体减小、细胞密度降低、突起缩短、神经网路减少等情况,表明铅对皮质神经细胞分化的抑制作用,且具有剂量效应。昌业伟等[11]报道,用Pb (Ac)50、100 μg/ml处理后的海马神经元表面粗糙、胞体变小、突起细小、细胞间网络疏松、胞体与胞浆之间界限逐渐模糊不清、核仁不清晰等;路浩等[12]研究发现,原代培养的新生大鼠大脑皮质神经细胞经铅处理12 h后,神经细胞密度降低、神经网络减少、神经细胞胞体短直径显著减小,这些研究结果均提示铅具有损害作用。本研究原代小胶质细胞的形态学与上述报道具有类似性,MTT结果也提示Pb(Ac)2可降低原代小胶质细胞的存活率,间接显示了Pb (Ac)2的毒性作用。
小胶质细胞是脑内驻留的巨噬细胞。静息的小胶质细胞胞体较小且活跃,当发生应激和损伤时,激活的小胶质细胞释放的细胞因子和趋化因子可诱导巨噬细胞释放细胞毒性物质,介导神经毒性,引起胶质细胞死亡[13]。NO作为一种神经毒性介质,由一氧化氮合酶(nitric oxide synthase, NOS)催化L-精氨酸产生,参与人体生理功能的调节和病理过程[14]。iNOS作为NOS的3种主要类型之一[15],是NO的合成催化酶,病理条件下,iNOS才被诱导激活表达于小胶质细胞[16,17]。用LPS介导胶质细胞产生氧化应激反应,通常是研究者用于研究AD的手段,LPS可介导小胶质细胞激活导致iNOS的高表达[18],进而产生大量NO[19],对神经系统造成损伤,可能参与神经变性疾病如AD的发生发展[20,21]。本研究用Pb(Ac)2和LPS同时与原代小胶质细胞共孵育24或36 h,结果显示Pb (Ac)2可下调LPS介导的原代小胶质细胞NO、iNOS,与Dörpinghaus 等[22]研究结果相符,但与王伟轩等[23]研究结果不同。本研究所用小胶质细胞来源于动物本身,其比来源于肿瘤的小胶质细胞株BV2更进了一步或更贴近真实世界,反应也更加真实;所用的单一原代细胞观察铅毒性在内毒素LPS存在下的表现,不但有利于作用机理研究,且更有益于集中观察真实来源的小胶质细胞反应、阐述整体动物实验不易解决的问题,成为上述两种实验研究的补充。本研究染铅后使LPS介导的NO和iNOS下调,似乎可减轻氧化应激反应,但细胞形态学及细胞存活率呈现损伤变化,形态学变化与NO、iNOS生化结果不一致呈“分离现象”,该现象的原因或作用机理目前尚不清楚,需进一步深入研究。本研究还发现,一定浓度下的铅与LPS共同作用于原代小胶质细胞,有氧化应激指标NO、iNOS下调作用,形态学观察提示有细胞突起或分枝生长增加现象,而又未使细胞胞体生长恢复,是否可以应用我们前期研究已证实强抗氧化剂虾青素对小胶质细胞和神经元有保护作用的理念进行调节,也有待进一步研究。
综上所述,本研究模拟铅作业工人遇严重革兰氏阴性菌感染,发现中枢神经系统固有免疫细胞小胶质细胞对一定浓度内的铅不单独产生NO、iNOS上调作用,但有细胞形态损伤变化;但是,正常的小胶质细胞,即未染铅时,对内毒素LPS反应明显,同时出现细胞形态变化和生化指标上调;在二者同时存在下,铅可使小胶质细胞更加耐受NO、iNOS的产生和有细胞的不同损害。因此提示,长期铅作业工人对革兰氏阴性菌感染产生的LPS毒性可能有掩盖内毒素引起损伤的作用,可能不易发现细胞已有损伤,因此建议可用抗氧化剂进行防御,以免后续中枢神经系统进一步损害或导致阿尔茨海默病等认知功能损害的发生。

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